Склероз

Правила взятия, хранения и транспортировки биологического материала

Подготовка к взятию мазков

Как правило, никакой особой подготовки не требуется. Но нельзя, чтобы женщина перед визитом к врачу использовала спринцевания с любыми антисептическими средствами или вводила во влагалище какие-либо свечи. Вполне достаточно обычных наружных гигиенических процедур с мылом или средством для интимной гигиены.

Кроме этого, не должно быть полового акта минимум за 24 часа до исследования. В зависимости от менструального цикла оптимальное время для забора мазков — в ближайшую неделю после окончания месячных. И нежелательно проводить исследование за 5 дней перед началом менструации.

При осмотре шейки матки и стенок влагалища в зеркалах врач с помощью шпателя или цитощетки забирает выделения и наносит их на предметное стекло. Обязательно нужно взять мазки слизи из шейки матки и выделения с любого бокового свода влагалища. После удаления гинекологического зеркала из влагалища дополнительно берется мазок из уретры (мочеиспускательного канала).

Содержание

  1. 1. Правила подготовки пациентов
  2. 2. Правила взятия, хранения и транспортировки крови
    1. 2.1взятие венозной крови
    2. 2.2гематологические исследования, группа крови, резус-фактор
    3. 2.3исследование гемостаза
    4. 2.4биохимические исследования, аллергологические исследования, исследования гормонов, аутоантител, онкомаркеров,
      маркеров остеопороза, серологических маркеров инфекционных заболеваний
  3. 3. Правила взятия, хранения и транспортировки материала для пцр
    1. 3.1кровь для пцр
    2. 3.2биоматериал (не кровь), для пцр
      1. 3.2.1соскоб эпителиальных клеток из урогенитального тракта женщины
      2. 3.2.2соскоб эпителиальных клеток из уретры мужчин
      3. 3.2.3сперма
      4. 3.2.4моча
      5. 3.2.5мокрота
      6. 3.2.6биопсийный материал
      7. 3.2.7спинномозговая жидкость (ликвор)
      8. 3.2.8слюна
  4. 4. Правила сбора, хранения и транспортировки мочи
    1. 4.1методика сбора мочи и подготовка пациента для общего анализа мочи
    2. 4.2методика сбора мочи и подготовка пациента для анализа мочи по Нечипоренко
    3. 4.3сбор суточной мочи
    4. 4.4биохимическое исследование мочи
    5. 4.5проба Реберга
  5. 5. Правила взятия, хранения и транспортировки различных видов биологического материала
    1. 5.1мужской мазок, соскоб из уретры для микроскопического исследования
    2. 5.2женский мазок, урогенитальный соскоб для микроскопического исследования
    3. 5.3материал для цитологического исследования
    4. 5.4женский мазок на АК
    5. 5.5материал для гистологического исследования
    6. 5.6гормональная цитодиагностика по вагинальным мазкамм
    7. 5.7образцы сухой крови на фильтре или марле для определения родства
    8. 5.8образцы букального эпителия для определения родства
    9. 5.9биосубстраты для определения химических элементов (волосы и ногти)

Правила взятия, хранения и транспортировки биологического материала

При плановом обследовании рекомендуется производить взятие крови:

  • утром натощак (кровь для определения параметров липидного профиля — холестерин, ЛПВП, ЛПНП, триглицериды — следует сдавать строго после
    12-часового голодания; для определения пролактина после сна должно пройти не менее 2 часов)
  • до осуществления диагностических или терапевтических процедур,
  • за 24 ч до исследования исключить прием алкоголя.

Следует помнить, что:

  • утренний прием лекарств должен проводиться только после взятия крови,
  • физическая и мышечная нагрузка, тренировки, упражнения должны быть исключены как минимум за 3 дня до взятия крови,
  • психические нагрузки, стрессы значительно изменяют биохимические показатели, поэтому при взятии крови следует создать спокойную, доброжелательную обстановку.
  1. 1. Выбрать пробирки по цвету крышек, приготовить иглу, держатель, спиртовые салфетки, пластырь. Осуществлять забор крови только с использованием стерильных одноразовых систем. Работать только в одноразовых перчатках.
  2. 2. Наложить жгут на 7–10 см выше места прокола, обработать место прокола.
  3. 3. Взять иглу и снять защитный колпачок с нее (если используется двусторонняя игла — снять защитный колпачок серого цвета) со стороны, закрытой резиновой мембраной.
  4. 4. Вставить иглу в иглодержатель и завинтить до упора.
  5. 5. Снять защитный колпачок зеленого (черного) цвета со второй стороны иглы и ввести иглу в вену. Черная точка на игле указывает место заточки иглы.
  6. 6. Вставить заранее приготовленную пробирку в иглодержатель до упора и удерживать ее пока кровь не перестанет поступать в пробирку. При этом игла прокалывает резиновую мембрану и резиновую заглушку в крышке пробирки. Кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный в пробирке вакуум (если кровь не идет — это значит, что игла прошла вену насквозь или уперлась в стенку вены — в этом случае нужно немного вытянуть иглу (но не вынимать!) пока кровь не пойдет в пробирку). Для визуального контроля
    уровня заполнения на этикетке имеется метка черного цвета. Вакуумные пробирки при правильном взятии самопроизвольно заполняются до нужной метки.
  7. 7. Извлечь пробирку из держателя. Если это необходимо, в иглодержатель вставить ряд других пробирок для получения нужного объема крови для различных исследований. Повторно вводить иглу в вену для этого не нужно. Если необходимо взять кровь в несколько пробирок, повторить процедуры № 6–7. Строго соблюдать очередность взятия крови. Вынуть последнюю пробирку из иглодержателя. Снять жгут.
  8. 8. Наложить спиртовой шарик, извлечь иглу вместе с иглодержателем из вены и снять ее с иглодержателя.
  9. 9. Перемешать содержимое пробирки путем покачивания пробирки несколько раз (касается только голубых, фиолетовых и серых пробирок). Не встряхивать пробирку: резкое смешивание может вызвать пенообразование и гемолиз!!!
  10. 10. Поставить пробирку в штатив или перенести в холодильник (голубые и фиолетовые пробирки в холодильник не ставить, а хранить при комнатной температуре).
  11. 11. Вложить бланки в транспортную папку.

Последовательность заполнения пробирок: 

  • Пробирка с красной крышкой, либо коричневой крышкой.
  • Пробирка с голубой крышкой
  • Пробирка с фиолетовой крышкой
  • Пробирка с серой крышкой

Внимание!!! Если есть необходимость забора крови только для исследования гемостаза (пробирка с голубой крышкой), кровь берется в две пробирки с голубой крышкой, причем исследуется проба во второй пробирке, а первая пробирка выбрасывается.

Строго соблюдайте правила хранения и транспортировки клинических проб!!!

Сразу после взятия осторожно переверните пробирку 8–10 раз (воздушный пузырёк должен переместиться из одного конца пробирки в другой). Не встряхивайте пробирки: резкое смешивание может вызвать пенообразование и гемолиз!Хранение: при комнатной tº.Транспортировка: зимой в термоконтейнерах без хладагентов. Летом в термоконтейнере с 1 хладагентом.

Сразу после взятия осторожно переверните пробирку 3–4 раза (воздушный пузырёк должен переместиться из одного конца пробирки в другой). Не встряхивайте пробирки: резкое смешивание может вызвать пенообразование и гемолиз!Хранение: при комнатной tº.Транспортировка: зимой в термоконтейнерах без хладагентов. Летом в термоконтейнере с 1 хладагентом.

Не встряхивайте пробирки: резкое смешивание может вызвать пенообразование и гемолиз!Хранение: 30 мин. при комнатной температуре, затем поместить в холодильник при tº 4 8 ºС.Транспортировка: в вертикальном положении в термоконтейнерах при tº 4 8 ºС.

АКТГ (замороженная пробирка — только на Бородинской)

Цветовой код Число перемешиваний Тип анализа Область применения Химические наполнители
Рис.1красный Биохимические, гормональные, серологические исследования. Онкомаркеры. Аутоантитела. Исследования сыворотки в клинической химии, серологии, иммунологии Активатор образования сгустка
Рис.2голубой 3-4 раза Гемостаз, Д-димер Исследования Коагуляции, ВА, Д-димер Цитрат натрия
Рис.3фиолетовый 8-10 раз Гематология. Гликозилированный гемоглобин. АКТГ. ПЦР, иммунный статус, ретикулоциты, СОЭ, лекарственная непереносимость Исследования цельной крови ЭДТА

Сразу после взятия осторожно переверните пробирку 8–10 раз, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом (иначе кровь свернется и выделение ДНК станет невозможным). После плавного перемешивания пробирку помещают в штатив.Хранение: при комнатной tº.Транспортировка: зимой в термоконтейнерах без хладагентов. Летом в термоконтейнере с 1 хладагентом.

Взятие материала. Соскобы производят из трех точек тремя разными зондами: цервикальный канал, задний свод влагалища, уретра — в одну пробирку, поочередно ополаскивая каждый зонд. При необходимости берут материал из эрозивно-язвенных поражений. Отделяемое забирают в небольшом количестве. Присутствие примесей (слизь, кровь, гной) недопустимо, т. к. приводит к деградации исследуемых микроорганизмов.

ВНИМАНИЕ! Никогда не смачивайте в пробирках типа «Эппендорф» зонды перед забором отделяемого, т. к. они заполнены или содержат транспортную среду (может вызвать зуд, раздражение, ожог)!

Цервикальный канал: удаляют слизь с поверхности шейки матки шпателем гинекологическим, либо зондом (после чего зонд либо шпатель выбрасывают). Вводят зонд в цервикальный канал на 1–1,5 см и вращают его в течение 3–5 сек. Извлекают зонд, избегая касания стенок влагалища, и помещают его в стерильную одноразовую пробирку с транспортной средой.

Задний свод влагалища. В случае избытка слизи и обильных выделений удаляют их шпателем гинекологическим, либо зондом (после чего их выбрасывают). Проводят зондом по поверхности слизистой в области заднего свода влагалища и экзоцервикса и переносят зонд в пробирку с транспортной средой.

Уретра: перед взятием соскоба из уретры обрабатывают ее наружное отверстие сухим стерильным зондом. Вводят зонд в уретру на глубину 1–1,5 см и аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток.

Переносят зонд в пробирку типа «Эппендорф» с транспортной средой. Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращают зонд в течение 10–15 сек., избегая разбрызгивания раствора. Вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки. Отжав избыток жидкости, удаляют зонд и закрывают пробирку.

В процедурном кабинете должен быть запас стерильных зондов (либо тампонов) для удаления слизи. Шпатель гинекологический входит в гинекологический набор.Хранение: при комнатной температуре — не более 6 час., при tº 2 8 ºС не более 7 дней.Транспортировка: в термоконтейнерах с охлаждающими элементами.

Взятие материала. Перед взятием соскоба из уретры необходимо воздержаться от мочеиспускания в течение не менее двух часов. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим зондом (после чего его выкидывают). Вводят зонд в уретру на глубину 3–4 см.

несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток и переносят зонд в пробирку типа «Эппендорф» с транспортной средой. Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращают зонд в течение 10–15 сек., избегая разбрызгивания раствора.

Вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки. Отжав избыток жидкости, удаляют зонд и закрывают пробирку. Присутствие примесей (слизь, кровь, гной) недопустимо, т. к. приводит к деградации исследуемых микроорганизмов.В процедурном кабинете должен быть запас стерильных зондов (либо тампонов) для удаления слизи.

Взятие материала. Взятие спермы осуществляют в стерильный одноразовый флакон.Хранение: при комнатной температуре — не более 6 часов, при tº 2 8 ºС — не более 3 дней.Транспортировка: в термоконтейнерах с охлаждающими элементами.

Взятие материала. После гигиены наружных половых органов для анализа отбирают всю порцию утренней мочи в специальный контейнер для мочи. Мочу оставить на 1 час для оседания эпителиальных клеток. Через час, касаясь дна, отобрать мочу через переходник в пробирку с желтой крышкой.

Оценка результата

Обычно результат исследования врачу доставляют из лаборатории через 1-2 дня. При оценке мазков врач смотрит на число лейкоцитов, вид и количество бактериальной микрофлоры, наличие специфических возбудителей инфекций и степень чистоты. В зависимости от этих факторов выделяют:

  • 1-2 степень чистоты, при которых лейкоцитов минимальное количество, микрофлора в виде палочек, которыми обычно бывают полезные лактобактерии, и нет никаких возбудителей инфекций;
  • 3 степень, при которой лейкоцитов до 20 в поле зрения, смешанная микрофлора, представленная преимущественно палочками и бактериями кокковидной формы, которые при определенных условиях могут вызвать заболевание, но нет специфических возбудителей;
  • 4 степень чистоты подразумевает воспалительный мазок с большим количеством лейкоцитов, болезнетворной кокковой микрофлорой и наличием посторонних микроорганизмов. Даже если количество лейкоцитов не превышает нормы, и преобладает смешанная микрофлора, но во влагалище обнаруживаются мицелий и споры дрожжевого грибка, простейшие или возбудители инфекций, передающихся половым путем, то это тоже относится к 4 степени чистоты.

При 4 степени чистоты требуется дообследование и лечение. При выявлении специфических микроорганизмов, вызывающих передающиеся половым путем болезни, лечение проводится совместно с врачом-венерологом. При 3 степени чистоты и наличии жалоб у женщины необходимо дополнительное обследование с последующей санацией влагалища. 1-2 степень чистоты считается нормой.

Категория: Анализы и обследования, ГинекологияТемы: заболевания половой сферы, методики обследования, подготовка к беременностиСсылка на материал: Гинекологический мазок. Как проводится забор гинекологического мазка на степень чистоты

Adblock
detector